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So bereiten Sie ein steriles konisches Zentrifugenröhrchen vor

Zhejiang Saining Biotechnology Co., Ltd. High-Clity Sterile konische Einweg-Zentrifugenröhrchen aus PP sind ein vielseitiges Werkzeug zur Zellzentrifugation und Pelletierung. Diese Polypropylen-Zentrifugenröhrchen mit konischem Boden werden in ISO 13485:2012-zertifizierten Anlagen hergestellt und verfügen über traditionelle Stopfenverschlusskappen aus Polyethylen. Sie sind auf hohe Klarheit, Festigkeit und Benutzerfreundlichkeit ausgelegt.
Bevor Sie ein konisches Zentrifugenröhrchen verwenden, müssen Sie sicherstellen, dass das Röhrchen dem beim Zentrifugieren erforderlichen Druck standhält. Um Verwechslungen vorzubeugen, ist es wichtig, den Füllstand zu ermitteln und ein Lösen des Verschlusses während des Gebrauchs zu vermeiden.
Für Zellkulturanwendungen werden sterile konische Zentrifugenröhrchen verwendet. Dieser Rohrtyp verfügt über einen hochfesten Herstellungsprozess und ist auf eine höhere Temperaturstabilität ausgelegt. Um ein konisches Zentrifugenröhrchen vorzubereiten, befolgen Sie die unten aufgeführten Schritte.
Geben Sie in jedes sterile konische Zentrifugenröhrchen das richtige Volumen Dichtegradientenmedium. Dichtegradientenmedien sind in einer Vielzahl von Medien erhältlich, darunter Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) und PBS. Beide sind Salzlösungen und enthalten weder Kalzium noch Magnesium. HBSS ist jedoch geeignet, da es weniger sauer als PBS ist.
Als nächstes verdünnen Sie das Blut und das anfängliche Trennmedium mit WDR. Übertragen Sie die Probe nach der Verdünnung in das sterile konische Zentrifugenröhrchen. Wenn das Blut nicht verdünnt wird, erscheint das Plasma unterhalb der Dichtegradientenschicht und kann schwierig abzutrennen sein. Alternativ können die PBMCs durch Verdünnung des gesamten Plasmas vom Plasma abgetrennt werden.
Zum Schluss bündeln Sie die Buffy Coats und die Phagenbänder in einem konischen 50-ml-Zentrifugenröhrchen. Beschriften Sie das Röhrchen mit der PTID und den Initialen des Technikers. Sobald die Probe erneut zentrifugiert wurde, entfernen Sie die Phagenbanden und verwerfen Sie den Überstand.
Um die Integrität der Probe aufrechtzuerhalten, wird empfohlen, ein Protokoll für die Reagenzien zu befolgen, beispielsweise die Underlay-Methode. Diese Methode basiert auf der Schwerkraft zwischen den beiden Schichten und erzeugt Aggregate. Andere Methoden, wie z. B. manuelle Überlagerung, sind ebenfalls verfügbar.
Um die Möglichkeit einer Vermischung zu minimieren, wird empfohlen, das ursprüngliche Blutröhrchen auf das Dichtegradientenmedium zu pipettieren. Das Blut und die Dichtegradienten-Medienlösung müssen langsam und vorsichtig pipettiert werden.
Wenn ein konisches Zentrifugenröhrchen dem Druck der Probe nicht standhält, können Sie ein Nachzentrifugenröhrchen verwenden. Stellen Sie sicher, dass das Rezentrifugenröhrchen steril ist und dem Druck standhält. Das Rezentrifugenröhrchen muss zwischen den Anwendungen auf Raumtemperatur gehalten werden. Alternativ kann das Rezentrifugenröhrchen bei niedriger Temperatur gelagert werden. Während des Gefrier-Auftau-Zyklus sollte die Nachzentrifuge eine Temperatur von 2 bis 8 °C haben.
Wenn das Blut verdünnt wurde, können Sie WDR hinzufügen, um sein Volumen zu erhöhen. Sie können die Verdünnung auch in die sterilen konischen Zentrifugenröhrchen aliquotieren. Fügen Sie 0,1 ml WDR pro 10 ml Blut hinzu.
Darüber hinaus sollte auf allen erhaltenen Blutröhrchen eine PTID vermerkt werden. Die Verwendung einer PTID-Kennung trägt dazu bei, Kreuzkontaminationen zu minimieren. Außerdem können Sie jede PTID mit unterschiedlichen Farbmarkierungen markieren, um Verwirrung zu vermeiden.

Zentrifugenröhrchen

Variante Nr.

Modell

RCF

Sterilisation

Unten

Paketspezifikation

3030001

15 ml

12000xg

Ja

Kegelboden

50/Beutel, 10 Beutel/Karton

3030002

15 ml

12000xg

Ja

Kegelboden

50/Schaumstoffgestell, 10 Gestelle/Karton

3031001

50 ml

12000xg

Ja

Kegelboden

25/Beutel, 20 Beutel/Karton

3031002

50 ml

12000xg

Ja

Kegelboden

25/Schaumstoffgestell, 20 Gestelle/Karton

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