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Wie man eine sterile konische Zentrifugenröhre vorbereitet

Zhejiang Saining Biotechnology Co., Ltd. Hochklemme PP -Einweg -sterile konische Zentrifugenröhrchen sind ein vielseitiges Werkzeug für die Zentrifugation und Pelletierung von Zellen. Diese konischen zentrifugierenden Röhrchen mit Polypropylen werden in ISO 13485: 2012 zertifizierte Einrichtungen hergestellt und verfügen über herkömmliche Polyethylen -Steckdichtungskappen. Sie sind für hohe Klarheit, Stärke und Benutzerfreundlichkeit ausgelegt.
Vor Verwendung eines konischen Zentrifugenröhrchens müssen Sie sicherstellen, dass das Röhrchen dem während der Zentrifugation erforderlichen Druck standhalten kann. Um Mischen zu verhindern, ist es wichtig, die Füllpegel zu identifizieren und die Kappe während der Verwendung abzuschalten.
Für Zellkulturanwendungen werden sterile konische Zentrifugenröhrchen verwendet. Diese Art von Röhrchen hat einen hochfesten Herstellungsprozess und ist so konzipiert, dass er eine höhere Temperaturstabilität bietet. Um ein konisches Zentrifugenröhrchen vorzubereiten, befolgen Sie die unten beschriebenen Schritte.
Fügen Sie jeder sterilen konischen Zentrifugenröhre das korrekte Volumen der Dichtegradientenmedien hinzu. Dichtegradientenmedien sind in einer Vielzahl von Medien erhältlich, einschließlich Hanks 'Balanced Salt Solution (HBSS) und PBS. Beide sind Kochsalzlösung und enthalten kein Kalzium oder Magnesium. HBSS ist jedoch geeignet, da es weniger sauer ist als PBS.
Als nächstes verdünnen Sie das Blut und das anfängliche Trennungsmedium mit WDR. Übertragen Sie nach der Verdünnung die Probe in das sterile konische Zentrifugenröhrchen. Wenn das Blut nicht verdünnt ist, erscheint das Plasma unterhalb der Dichtegradientenschicht und kann schwer zu trennen sein. Wenn das gesamte Plasma verdünnt ist, können die PBMCs alternativ vom Plasma getrennt werden.
Bündeln Sie schließlich die Buffy Coats und die Phagenbänder in eine 50 ml konische Zentrifuge -Röhre. Beschriften Sie das Röhrchen mit der PTID und den Initialen des Technikers. Sobald die Probe neu zentrifugiert wurde, entfernen Sie die Phagebänder und verwerfen Sie den Überstand.
Um die Integrität der Probe aufrechtzuerhalten, wird empfohlen, einem Protokoll für die Reagenzien wie die Unterlagenmethode zu folgen. Diese Methode basiert auf der Gravitationskraft zwischen den beiden Schichten und erzeugt Aggregate. Andere Methoden wie manuelles Overlay sind ebenfalls erhältlich.
Um die Möglichkeit des Mischens zu minimieren, wird empfohlen, das anfängliche Blutrohr auf den Dichtegradientenmedien zu pipetten. Das Blut und die Dichtegradientenmedienlösung müssen langsam und sanft pipettiert werden.
Wenn ein konischer Zentrifugenrohr nicht in der Lage ist, den Druck der Probe zu bewältigen, können Sie ein Neuzentrifugerohr verwenden. Stellen Sie sicher, dass das Neuzentrifugerohr steril ist und dem Druck standhalten kann. Es soll die Neuzentrifugenröhre bei Raumtemperatur zwischen den Verwendungsmöglichkeiten halten. Alternativ kann das Umzentrifugerohr bei niedriger Temperatur gelagert werden. Während des Gefrier-Tauz-Zyklus sollte die Neuzentrifuge bei 2 bis 8 ° C liegen.
Wenn das Blut verdünnt wurde, können Sie das WDR zu ihm hinzufügen, um sein Volumen zu erhöhen. Sie können die Verdünnung auch in die sterilen konischen Zentrifugenröhrchen aliquotieren. Fügen Sie 0,1 ml des WDR pro 10 ml Blut hinzu.
Darüber hinaus sollte eine PTID auf allen Blutschläuchen vermerkt werden. Die Verwendung einer PTID-Kennung hilft bei der Minimierung einer Kreuzkontamination. Außerdem können Sie jede PTID mit unterschiedlichen Farbmarkern markieren, um Verwirrung zu vermeiden.

Zentrifugenröhre

Variante Nr.

Modell

RCF

Sterilisation

Unten

Paketspezifikation

3030001

15ml

12000xg

Ja

Kegelboden

50/Tasche, 10 Bags/Koffer

3030002

15ml

12000xg

Ja

Kegelboden

50/Foam Rack, 10RACKS/Koffer

3031001

50 ml

12000xg

Ja

Kegelboden

25/Tasche, 20 Taschen/Koffer

3031002

50 ml

12000xg

Ja

Kegelboden

25/Foam Rack, 20Racks/Case

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